Vol. 1, No. 1, Juli 2019

p-ISSN 2775-3832 ; e-ISSN 2775-7285

http://matriks.greenvest.co.id

EKSPLORASI DAN UJI VIRULENSI JAMUR PATOGEN GULMA DAUN

SEMPIT DI PERTANAMAN TEBU (Saccharum officinarum L.)

Dede Yusup Ziaulhak, Loekas Soesanto dan Abdul Manan

Universitas Jenderal Soedirman Purwokerto Jawa Tengah, Indonesia

Email: [email protected], [email protected] dan

[email protected]

Diterima:

7 April 2019

Direvisi:

5 Mei 2019

Disetujui:

6 Juni 2019

Abstrak

Untuk meningkatkan produksi Gula Nasional, pemerintah telah

berbuat banyak hal. Termasuk penambahan luas tanam tebu dari

381.800. Luas lahan tahun 2010 menjadi 429.200 hektar. Penelitian

ini bertujuan untuk mengetahui jenis jamur patogen penyebab

penyakit pada gulma daun sempit pada perkebunan tebu, informasi

virulensi jamur patogen terhadap gulma daun sempit pada

perkebunan tebu dan informasi virulensi jamur patogen gulma daun

sempit terhadap tanaman budidaya. Penelitian ini terdiri atas tiga

tahap yaitu eksplorasi, identifikasi dan uji virulensi jamur patogen

gulma. Hasil dari penelitian diperoleh jamur patogen Curvularia

lunata dan Fusarium oxysporum. Perlakuan jamur C. lunata pada

gulma C. rotundus menunjukkan intensitas paling besar di antara

gulma yang lain dan perlakuan F. oxysporum dengan intensitas

22,5714% bahkan mampu menimbulkan kematian pada gulma C.

rotundus. Sementara perlakuan jamur F. oxysporum menunjukkan

intensitas yang lebih besar pada gulma D. ciliaris dengan kisaran

6,116%. Jamur patogen gulma daun sempit virulen terhadap gulma

daun sempit dan tidak virulen terhadap tanaman budidaya yang

diujikan.

Kata kunci: Gulma; Jamur patogen gulma; Tebu

Abstract

To increase the production of Sugar National, the government has

done a lot. Including the addition of sugar cane planting area of

381,800. The land area in 2010 became 429,200 hectares. This study

aims to find out the types of pathogenic fungi that cause disease in

narrow leaf weeds on sugarcane plantations, information on the

virulence of pathogenic fungi against narrow leaf weeds on

sugarcane plantations and information on the virulence of narrow

leaf weed pathogenic fungi against cultivated plants. This research

consists of three stages, namely exploration, identification and

virulence test of weed pathogenic fungi. The results of the study

obtained pathogenic fungi Curvularia lunata and Fusarium

oxysporum. The treatment of C. lunata mushrooms on C. rotundus

weeds showed the greatest intensity among other weeds and the

treatment of F. oxysporum with an intensity of 22.5714% was even

able to cause death in the weed C. rotundus. Meanwhile, the

treatment of F. oxysporum fungus showed greater intensity on D.

ciliaris weed with a range of 6.116%. Pathogenic fungi of narrow

leaf weeds were virulent to narrow leaf weeds and not virulent to

cultivated plants tested.

Keywords: Weeds; Pathogenic fungi weeds; Sugar cane

Eksplorasi dan Uji Virulensi Jamur Patogen Gulma Daun

Sempit di Pertanaman Tebu (Saccharum Officinarum L.)

Matriks: Jurnal

Sosial dan Sains

Dede Yusup Ziaulhak, Loekas Soesanto dan Abdul Manan

Pendahuluan

Tebu (Saccharum officinarum L.) merupakan salah satu tanaman dengan nilai

ekonomi tinggi karena tebu merupakan bahan dasar dalam pembuatan gula. Selain

itu,limbah pengolahan gula juga dapat dimanfaatkan untuk kepentingan lainnya,

seperti pakan ternak, pupuk, jamur, bahan baku industri kimia, dan farmasi. Sekitar

78% gula berasal dari tanaman tebu (Kaur, Bhullar, & Gill, 2015). Produksi tanaman

tebu nasional pada tahun 2015 sebesar 2,4 juta ton dan tahun 2016 produksi tebusebanyak

2,2 juta ton, sentra produksi tebu terbesar adalah Provinsi Jawa Timur dengan

produksi pada tahun2015 sebanyak 1,2 juta ton dan 2016 produksi tebu mencapai 1,05

juta ton (Setyawati & Wibowo, 2019). Produksi tebu saat ini masih mengalami

kendala karena hambatan dari organisme pengganggu tumbuhan khususnya gulma.

Organisme ini merupakan tanaman yang keberadaannya tidak diinginkan pada areal

pertanaman karena gulma akan menjadi tanaman pesaing bagi tanaman utama.

Kehadiran gulma, dapat memberikan dampak pada produksi dengan kerugian 15-75%

bergantung pada kondisi alam dan kepadatannya. Keberadaan gulma pada areal

pertanaman tebu pada stadium pembibitan dapat menyebabkan pertumbuhan bibit

tanaman tebu tidak optimum, karena adanya persaingan dengan gulma (Raharjo,

Tyasmoro, & Sebayang, 2018). Pengendalian gulma dengan herbisida apabila

dilakukan terus menerus akan menimbulkan akumulasi residu yang berbahaya

bagi lingkungan, karena dapat menurunkan kualitas air dan sumber daya darat.

Menurut (Mohamad Taufik Fauzi & Murdan, 2009), penggunaan herbisida akan

menimbulkan dampak negatif karena peningkatan reaksi deoksigenasi dan risiko pada

organisme bukan sasaran. Pengendalian gulma secara kimia saat ini dinilai sudah tidak

efektif, mengingat pengaruh efek samping jangka panjang yang ditimbulkan

sangatlah membahayakan, seperti pencemaran lingkungan. Pengendalian herbisida

jangka panjang juga dapat menimbulkan lonjakan populasi gulma tahan terhadap

herbisida (Soesanto, L., Mugiastuti, E.& Manan, 2017). Saat ini pengendalian hayati

terhadap gulma dinilai lebih aman dan tidak merusak kestabilan lingkungan.

Pengendalian hayati ini berprinsip pada penggunaan musuh alami (organisme), selain

manusia, untuk mengurangi populasi gulma. Pengendalian gulma secara hayati

dipandang lebih aman dan menguntungkan dari segi lingkungan. Agensia hayati yang

umumnya digunakan adalah golongan jamur, karena mempunyai sifat merusak,

mampu diproduksi secara masal dan dapat diformula langsung, serta dapat

diaplikasikanpada tumbuhan secara langsung (Mohamad Taufik Fauzi & Murdan, 2009).

Jamur patogen gulma dapat ditemukan melalui serangkaian kegiatan eksplorasi dan

identifikasi baik di lapangan maupun laboratorium.

Beberapa jamur yang sudah digunakan sebagai mycoherbicide adalah

Phytophthora palmivora (Butl.) Butl. dan Colletotrichum gleosporioides(Penz.)Sacc.

f.sp. aeschynomen (Te Beest, Yang, & Cisar, 1992). Berdasarkan hal tersebut, maka

dilakukan penelitian eksplorasi dan uji virulensi jamur patogen gulma daun sempit

pada tanaman tebu dengan tujuan mengetahui jenis jamur patogen penyebab penyakit

gulma daunsempit pada perkebunan tebu,mengetahui virulensi jamur patogen terhadap

gulma daun sempit pada perkebunan tebu, dan terhadap tanaman budidaya.

Metode Penelitian

Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Perlindungan Tanaman dan

Rumah Kaca, Fakultas Pertanian,Universitas Jenderal Soedirman dari Oktober 2019

sampai Agustus 2020. Penelitian ini terdiri dari dua tahap, yaitu eksplorasi dan

identifikasi serta uji virulensi pada gulma daun sempit alang-alang (Imperata

cylindrica), teki ladang (Cyperus kyllingia), rumput teki (Cyeperus rotundus), jampang

Vol. 1, No. 1, Juli 2019

p-ISSN 2775-3832 ; e-ISSN 2775-7285

http://matriks.greenvest.co.id

(Eleusine indica), rumput kebo (Digitaria ciliaris), tanaman budidaya padi (Oryza sativa),

jagung (Zea mays) dan tebu (Sacharum officinarum L.). Penelitian ini menggunakan

rancangan lingkungan rancanganacak petak terbagi (split plot), dengan petak utama

jamur patogen gulma dengan petak anak gulma/tanaman budidaya. Pengambilan sampel

gulma daun sempit dilaksanakandi lahan perkebunan tebu milik warga di daerah

Kabupaten Pemalang dengan metode purposive random sampling dengan menetapkan

tiga titik pengambilan pada kebun tebu. Identifikasi gejala di lapangan dilakukan

dengan cara pengamatan seksama terhadap gejala yang ditimbulkan oleh jamur

patogen pada gulma daun sempitdengan serangan lebih dari 50%

(Sastrahidayat, 2016). Jamur patogen ditumbuhkan langsung pada medium PDA dan

dilakukan identifikasi, dengan pengamatan secara makroskopis dan mikroskopis

(Sholihah, Sritamin, & Wijaya, 2019).

Pengamatan makroskopis dengan mengamati secara visual jamur yang tumbuh

dalam hal bentuk koloni, warna koloni permukaan atas, warna koloni permukaan

bawah, bentuk permukaan koloni, dan bentuk tepi koloni. Pengamatan mikroskopis

dilakukan dengan mengambil jamur yang telah direisolasi menggunakan jarum,

diletakkan pada gelas benda yang sebelumnya ditetesi air steril, kemudian ditutup

dengan cover glass dan diamati di bawah mikroskop, kemudian dicocokan dengan

beberapa pustaka, seperti (Watanabe, 2010). Setelah jamur patogen gulma diperoleh

dilakukan uji Postulat Kochpada gulma berdaun sempit sehat dengan cara daun

gulma ditusuk hingga menembus sisi lain dari titik tusuk dengan luas kurang lebih

5 mm menyesuaikan dengan diameter bor gabus menggunakan jarum preparat steril,

kemudian isolat jamur patogen di bor gabus lalu ditempelkan di permukan bawah

daun gulma berdaun sempit yang sehat kemudian dibungkus dan diberi label. Lalu

diamati hingga muncul gejala dan pastikan kembali bahwa penyebabnya adalah jamur

patogen yang sama (Sudirga, 2016).

Jamur yang telah uji Postulat Koch kemudian diperbanyak dan dihitung kerapatan

konidiumnya untuk kemudian dilakukan uji virulensi pada gulma dan tanaman budidaya.

Jamur patogen di aplikasikan pada bagian bawah daun gulma dan tanaman

budidaya,penyemprotan dilakukan pada lokasi terpisah dengan unit percobaan lain untuk

setiap perlakuannya, untuk menghindari kontaminasi silang pada unit yang lainnya.

Tanaman dan gulma yang telah diaplikasikan jamur patogen diamati hingga gejala yang

sama muncul.

Variabel yang diamati meliputi masa inkubasi, intensitas penyakit, area under

diseases progress curve (AUDPC), bobot tanaman basah, dan bobot tanaman kering.

Masa inkubasi dihitung sejak inokulasi patogen hingga gejala penyakit pada gulma dan

tanaman pertama kali muncul, dengan satuan hari setelah inkubasi. Intensitas serangan

patogen dapat dihitung dengan rumus (Prabaningrum & Moekasan, 2016):

Keterangan:

P= Intensitas penyakit

𝑃 =

∑(𝑛𝑥𝑣)

𝑁𝑥𝑍

𝑥 100%

v Nilai (skor) inensitas penyakit berdasarkan luas daun seluruh tanaman yang

terserang( Prabaningrum dan Moekasan, 2014), yaitu:

0= tidaka da kerusakan sama sekali

1= luas kerusakan tanaman >0- ≤10%

2= luas kerusakan tanaman 10- ≤20%

3= luas kerusakan tanaman 20-≤40%

4= luas kerusakan tanaman 40≤60%

Eksplorasi dan Uji Virulensi Jamur Patogen Gulma Daun

Sempit di Pertanaman Tebu (Saccharum Officinarum L.)

Matriks: Jurnal

Sosial dan Sains

Dede Yusup Ziaulhak, Loekas Soesanto dan Abdul Manan

5= luas kerusakan tanaman >60%

n= jumlah tanaman yang memiliki nilai v (kerusakan tanaman) yang sama

Z= nilai (skor) tertinggi (v=5)

N= jumlah tanaman yang diamati

AUDPC dihitung menggunakan menggunakan integrasi metode trapezoid (Hanudin

et al., 2011), dengan rumus sebagai berikut:

𝑛−1

Keterangan:

𝐴𝑈𝐷𝑃𝐶 =

∑

𝑌

i+1

+ 𝑌

)| 𝑡

i+1

− 𝑡

i+1

= Data pengamatan ke-i+1

= Data pengamatan ke-i

i+1

=Waktu Pengamatan ke-i+1

= Waktu pengamatan ke-i

n = Jumlah total pengamatan

Tanaman yang telah selesai diamati kemudian ditimbang untuk memperoleh nilai

bobot tanaman segar. Tanaman yang sudah ditimang kemudian dikeringkan untuk

memperoleh nilai bobot kering tanaman. Proses ini dilakukan dengan menyimpan

seluruh bagian tanaman dalam oven dengan suhu 70

C dengan waktu 48 jam (Sianipar,

Jaya, & Sinaga, 2020). Data yang di peroleh dianalisis dengan uji F, apabila berbeda

nyata dilanjutkan dengan duncan multiple range test (DMRT) pada taraf 5%.

Hasil dan Pembahasan

Eksplorasi dan identifkasi jamur patogen gulma daun sempit memperoleh hasil

Curvularia lunata dan Fusarium oxysporum (Gambar 1-4), sebagai kandidat untuk uji

virulensi. Jamur yang telah diperoleh sebelum memasuki tahap uji virulensi, jamur diuji

postulat Koch terlebih dahulu. dengan menginfeksikan jamur pada gulma asal. Jamur

yang telah melalui postulat Koch, kemdudian diperbanyak untuk keperluan uji virulensi.

Uji virulensi C. lunata dan F. oxysporum dilakukan dengan menyemprotkan suspensi

jamur pada gulma sebanyak 20 ml dengan kerapatan konidium masing-masing sebanyak

5 x 10

dan 3,5 x 10

spora/ml.

Gambar 1. Jamur Curvularia lunata hasil eksplorasi. Keterangan: a) koloni jamur pada

medium PDA, b) konidium pada perbesaran 400x (Sumber: Dokumentasi

Pribadi).

Vol. 1, No. 1, Juli 2019

p-ISSN 2775-3832 ; e-ISSN 2775-7285

http://matriks.greenvest.co.id

Gambar 2. Jamur Curvularia lunata.Keterangan:a-b) Koloni jamur Curvularia lunata

pada medium OA dan PCA c-h) konidium dan konidiofor, i) klamidospora

(Madrid et al., 2014).

Gambar 3. Koloni jamurFusarium oxysporum. Keterangan:a) koloni pada medium PDA

(Sumber: Dokuentasi Pribadi), b) Padamedium PDA (Selvi, K. &

Sivakumar, 2012).

Gambar 4. Kenampakan mikroskopis Fusarium oxysporumKeterangan:.a) Fusarium

oxsporum asal hutan mangrove (Selvi, K. & Sivakumar, 2012), b)

Fusarium oxsporum asal gulma Imperata cyliandica, perbesaran 400

(Sumber Dokumentasi Pribadi)

Eksplorasi dan Uji Virulensi Jamur Patogen Gulma Daun

Sempit di Pertanaman Tebu (Saccharum Officinarum L.)

Matriks: Jurnal

Sosial dan Sains

Dede Yusup Ziaulhak, Loekas Soesanto dan Abdul Manan

Tabel 1. Tabel komponen pertumbuhan dan patosistem dari uji virulensi jamur patogen

gulma daun sempit terhdap gulma daun sempit

Kombinasi Perlakuan

Masa

Inkubasi

IP (%)

AUDPC

Bobot

GulmaSegar

Bobot

Gulma

Kering

Kontrol

21 a

1,26 a

1,31 a

1,51 a

0,92 a

Curvularia lunata

14,02 b

1,46 b

1,66 b

1,54 a

0,98 b

Fusarium oxysporum

11,73 c

1,44 b

1,71 b

1,51 a

0,94 ab

Imperata cyliandrica

18,14 a

1,29 a

1,47 a

1,72 d

0,69 a

Cyperuskyllingia

17,63 a

1,32 b

1,46 a

1,47 b

1,07 d

Cyperus rotundus

14,81b

1,46 d

1,56 b

1,43 b

1,01 c

Eleusine indica

14,33b

1,45 d

1,68 c

1,64 c

0,79 b

Digitaria ciliaris

13c

1,42 c

1,61 bc

1,34 a

1,17 e

Kontrol x I. Cyliandrica

21a

1,26 a

1, 41 b

1,67 fg

0,72 bc

Kontrol x C. Kyllingia

21a

1,26 a

1,43 cd

1,07 h

Kontrol x C. Rotundus

21a

1,26 a

1,44cd

0,92 f

Kontrol x E. Indica

21a

1,26 a

1,63 f

0,76 cd

Kontrol x D. Ciliaris

21a

1,26 a

1,36 b

1,14 i

C. lunata x I. Cyliandrica

19,44 b

1,28 a

1,26 a

1,71 g

0,71 b

C. lunata x C. Kyllingia

15,22 b

1,37 c

1,58 c

1,49 e

1,07 h

C. lunata x C. Rotundus

12,44f

1,65 g

1,84 e

1,43 cd

1,10 hi

C. lunata x E. indica

12,67f

1,56 f

1,93 e

1,65 f

0,82 e

C. lunata x D. ciliaris

10,33h

1,45 d

1,69 d

1,39 bc

1,18 j

F. oxysporum x I.

Cyliandrica

14 e

1,35 b

1,66 d

1,79 h

0,65 a

F. oxysporum x C. Kyllingia

16,67c

1,34 b

1,55 bc

1.48 de

1,06 h

F. oxysporum x C. Rotundus

11 g

1,46 d

1,58 c

1,40 bc

1,01 g

F. oxysporum x E. indica

9,33 i

1,51 e

1,86 e

1,64 f

0,78 de

F. oxysporum x D. ciliaris

7,67 j

1,52 e

1,89 e

1,27 a

1,20 j

Keterangan: Angka yang diikuti oleh huruf yang berbeda pada kolom yang sama menunjukkan

berbeda nyata pada DMRT dengan taraf 5%.

F. oxysporum menunjukkan gejala lebih cepat ya itu pada kisaran 11,73 hari

dibandingkan C. lunata yang 14,002 hari (Tabel 1). Proses inkubasi dari jamur patogen

sangat dipengaruhi oleh komponen inang, lingkungan, dan kondisi dari patogennya.

Ketiga komponen ini menjadi penentu sukses tidaknya infeksi (Pilli, Kumar, &

Pilaka, 2016). Berdasarkan dari penelitian (M T Fauzi, 2009), jika komponen inang dan

lingkungan menguntungkan bagi patogen, maka virulensi akan meningkat dan

menimbulkan gejala lebih awal. Menurut (Nandhini, Ganesh, Yoganathan, & Kumar,

2019), masa inkubasi menjadi parameter mengenai adaptif tidaknya jamur patogen

terhdap lingkungan.

Perlakuan jamur C. lunata pada gulma C. rotundus menunjukkan intensitas yang

paling besar di antara gulma yang lain, dan perlakuan F. oxysporum dengan intensitas

22,5714% bahkan mampu menimbulkan kematian pada gulma C. rotundus. Sementara

perlakuan jamur F. oxysporum menunjukkan intensitas lebih besar pada gulma D. Ciliaris

dengan kisaran 6,116%. Perkembangan jamur patogen gulma pada gulma menujukkan

tanggapan berbeda oleh setiap gulma.

Vol. 1, No. 1, Juli 2019

p-ISSN 2775-3832 ; e-ISSN 2775-7285

http://matriks.greenvest.co.id

Perkembangan Penyakit

Curvularia lunata terhadap Gulma

1 2 3 4 5 6 7

Pengamatan

D.ciliaris

E.indica

C.rotundus

C.kyllingia

Imperata cyliandrica

Gambar 5. Pola perkembangan penyakit Curvularia lunata terhadap gulma.

Perkembangan Penyakit

Fusarium oxysporum terhadap Gulma

1 2 3 4 5 6 7

Pengamatan

D.ciliaris

E.indica

C.rotundus

C.kyllingia

I.cyliandica

Gambar 6. Pola perkembangan penyakit Fusarium oxysporum terhadap gulma.

Perkembangan penyakit terparah terjadi pada gulma C. rotundus yang diaplikasi C.

lunata. Sementara aplikasi F. oxysporum sangat memengaruhi D. ciliaris dan E. indica

(Gambar 5 dan 6). Besar kecilnya dampak yang ditimbulkan oleh jamur patogen

berkaitan dengan mekanisme hipersensitif tanaman, yang merupakan salah satu bentuk

pertahanan tanaman terhadap patogen dengan membuat jaringan sekitar bagian terinfeksi

mengering. Penelitian (Sneideris, Ivanauskas, Suproniene, Kadziene, & Sakalauskas,

2019) menerangkan bahwa kondisi genetika dari patogen juga dapat menjadi petunjuk

variasi keganasan, kecepatan tumbuh dan racun yang dihasilkan. Berdasarkan gambar

perkembangan penyakit (Gambar 5-6), area yang paling luas merupakan petunjuk

berhasilnya jamur menginfeksi gulma dan menjadi pertanda kerusakan semakin besar,

sesuai dengan penelitian (Milati & Nuryanto, 2019) bahwa semakin parah penyakit pada

Intensitas Penyakit (%)

Eksplorasi dan Uji Virulensi Jamur Patogen Gulma Daun

Sempit di Pertanaman Tebu (Saccharum Officinarum L.)

Matriks: Jurnal

Sosial dan Sains

Dede Yusup Ziaulhak, Loekas Soesanto dan Abdul Manan

tanaman, maka akan berpengaruh pada ukuran dari luas area daerah di bawah kurva

perkembangan penyakit.

Hasil penelitian (Tabel 7), bahwa tanaman budidaya yang diaplikasi oleh jamur

patogen gulma tidak terpengaruh karena tidak munculnya gejala selama penelitian

berlangsung. Kondisi ini terlihat dari nilai intensitas penyakit 0%, dan hal ini berpengaruh

pada variabel lain yaitu AUPDC yang nilainya terpengaruh oleh nilai intensitas penyakit.

Tidak adanya kerusakan artinya kurva perkembangan penyakit tidak dapat terbentuk.

Masa inkubasi jamur patogen gulma tidak memberikan pengaruh dari awal aplikasi

hingga aplikasi terakhir. Hal tersebut dapat dikaitkan dengan asal-usul jamur patogan

gulma dapat menjadi petunjuk mengenai spesifikasi inang dan virulensi jamur.

Tabel 2. Tabel komponen pertumbuhan dan patosistem dari uji virulensi jamur patogen

gulma daun sempit terhdap tanaman budidaya

Kombinasi Perlakuan

Masa

Inkubasi

IP(%)

AUDPC

Bobot

Tanaman

Budidaya

Segar

Bobot

Tanaman

Budidaya

Kering

Kontrol

21a

1,76 a

1,39 a

Curvularia lunata

21a

1,74 a

1,44 a

Fusarium oxysporum

21a

1,86 a

1,41 a

Oryza sativa

21a

1, 13 a

1,11 a

Zea mays

21a

1,48 b

1,18 b

Saccharum officinarum

21a

2,74 c

1,95 c

Kontrol x O. Sativa

21a

1,14 a

1,11 a

Kontrol x Z. Mays

21a

1,47 b

1,13 ab

Kontrol x S. officinarum

21a

2,66 c

1,95 de

C. lunata x O. Sativa

21a

1,14 a

1,11 a

C. lunata x Z. Mays

21a

1,52 b

1,17 b

C. lunata x S officinarum

21a

2,58 c

1, 99 e

F. oxysporum x O. Sativa

21a

1,14 a

1,10 a

F. oxysporum x Z. Mays

21a

1,46 b

1,17 b

F. oxysporum x S officinarum

21a

2,99 d

1,95 de

Keterangan: Angka yang diikuti oaleh huruf yang berbeda pada kolom yang sama

menunjukkan berbeda nyata pada DMRT dengan taraf 5%.

Tidak adanya pengaruh dari jamur patogen gulma terharap tanaman budiaya

terlihat secara statistika pada bobot tanaman segar dan kering terlihat pada notasi huruf

dibelakang yang sama untuk setiap perlakuanya. Menurut (Sutton et al., 2019), patogen

gulma memiliki kisaran inang yang spesifik.

Kesimpulan

Kesimpulan yang diperoleh dari penelitian ini yaitu jamur patogen gulma daun

sempit yang didapat dari hasil eksplorasi pada perkebunan tebu adalah Fusarium

oxysporum dan Curvularia lunata. Fusarium oxysporum dan Curvularia lunata virulen

pada gulma ditinjau dari kenampakan gejala. Fusarium oxysporum dan Curvularia lunata

tidak virulen pada tanamn budidaya padi, tebu dan jagung, ditinjau dari kenampakan

gejala.

Bibliografi

Fauzi, M.T. 2009. Patogenesitas jamur karat (Puccinia philiphinensis Syd), pada gulma

teki (Cyperusrotundus). J. HPT Tropika, 9(2): 141-148.

Vol. 1, No. 1, Juli 2019

p-ISSN 2775-3832 ; e-ISSN 2775-7285

http://matriks.greenvest.co.id

Fauzi, M.T., Murdan, & Muthahanas.,I. 2009. Potensi jamur Fusarium sp. sebagai agen

pengendali hayati gulma eceng gondok (Eichhornia crassipes). Jurusan Budidaya

Pertanian, Fakultas Petanian, Universitas Mataram. Mataram. (Online)

https://cropagro.unram.ac.id/index.php /caj/article/view/93/76diakses pada 11 Mei

2019.

Hanudin,W., Nuryani, E. S. Y., I Djatnika & Soedarjo, M. 2011. Perbandingan teknik

inokulasi Puccinia horiana dan seleksi bakteri antagonis untuk mengendalikan

penyakit karat putih pada krisan. J.Hort, 2(2): 173-184.

Kaur, N., Bhullar,M.S.& Gill,G. 2015. Weed management optios for sugarcane-vegetable

intercropping system in north western India. Crop Protection, 74 : 18-23.

Madrid, H., Cunha, K. C da., Gené, J., Dijksterhuis, J., Cano, J., Sutton, D.A., Guarno, J.

& Crous, P.W. 2015. Novel Curvularia species from clinical specimens. Persoonia,

33: 48-60.

Marin-Felix, Y., Hernández-Restrepo, M., Wingfield, M.J., Akulov, A., Carnegie, A.J.,

Cheewangkoon, R., Gramaje, D., Groenewald, J.Z., Guarnaccia, V., Halleen, F.,

Lombard, L., Luangsa-ard, J., Marincowitz, S., Moslemi, A., Mosert, L.,

Quaedvileg, W., Schumacher, R.K., Spies, C.F.J.,Thangavel, R., Taylor, P.W.J.,

Wilson, A.M., Wingfield, B.D., Wood A.R.&Crous, P.W. Genera of

phytopatogenic fungi : GOPHY 2. (Online) https:// doi.org/10.1016/

j.simyco.2018.04.002. diakses 11 Mei 2019.

Martin-Felix, Y., Groenewald, J.Z. , Cai, L., Chen, Q., Marincowitz, S., Barnes, I.,

Bensch, K., Braun, U., Camporesi, E., Damm, U., de Beer, Z.W., Dissanayake, A.,

Edwards, A., Giraldo, A., Hernández-Restrepo, M., Hyde, K.D.,Jayawardena,

R.S., Lombard, L., Luangsa-ard, J., McTaggart, A.R., Rossman, A.Y., Sandovai-

Denis, M.. Shen, M.,Shivas, R.G., Tan, Y.P., van der Linde, E.J., Wingfield, M.J.,

Wood, A.R., Zhang, J.Q., Zhang, Y., & Crous, P.W. Genera of phytopatogenic

fungi : GOPHY 1. (Online) 10.1016/j.simyco.2017.04.002. diakses 11 Mei 2019.

Milati, L.N. & Nuryanto B. 2019. Periode kritis pertumbuhan tanaman padi terhadap

infeksi penyakit hawar pelepah dan pengaruhnya terhadap hasil gabah. Penelitian

Pertanian Tanaman Pangan. 3(2):61-66.

Nandhini, C., Ganesh, P., Yoganathan, K. & Kumar, D. 2019. Efficacy of

Colletotrichumgleosporioides, potential fungi for bio control of Echinochloa crus-

gali (Barmyard grass). Journal of Drug Delivery and Therapeutics, 9(6):72-75.

Pili, G.G., Kumar, P.K.R. &Pilaka, B. 2016. Selection of some fungal pathogens for

biological control of Trianthemaportulacastrum L., a common weed of vegetable

crops. Journal of Applied Biology & Biotechnology, 4(4): 90-96.

Prabaningrum, L., & Moekasan,T. K. 2014.Pengelolaan organisme pengganggu

tumbuhan utama pada budidaya cabai merah di dataran tinggi. Jurnal Hortikultura,

24(2): 179- 188.

Raharjo, E.B., Tyasmoro,S.Y.& Sebayang, H.T. 2017. Pengaruh pengendalian gulma

pada pertumbuhan vegetatif dua jenis bibit tanaman tebu (Saccharum officinarum

L.). Jurnal Produksi Tanaman, 5(4) : 641-646.

Selvi, K. & Sivakumar, T. 2012. Isolation and characterization of silver nano particles

from Fusarium oxysporum. International Journal of Current Microbiology and

Apllied Sciences, 1(1): 56-62.

Setyawati, I. K. & Wibowo, R. 2019. Efisiensi teknis produksi usaha tani tebu plant cane

dan tebu atoon cane.JSEP, 12(1): 80-88.

Sianipar, H.F., Sijabat, A. & Pane, E.P. 2019. Pengaruh pemberian berbagai tingkat

mikoriza arbuskula pada tanah terakumulasi logam Pb terhadap pertumbuhan

tanaman belimbing wuluh (Averrhoa bilimbi). Jurnal Biosains, 5(2): 53-58.

Eksplorasi dan Uji Virulensi Jamur Patogen Gulma Daun

Sempit di Pertanaman Tebu (Saccharum Officinarum L.)

Matriks: Jurnal

Sosial dan Sains

Dede Yusup Ziaulhak, Loekas Soesanto dan Abdul Manan

Sneideris, D., Ivanauskas, A., Suproniene, S., Kadziene, G.& Sakalauskas, S. 2018.

Genetic diversity of Fusarium graminearum isolated from weeds. Eur J Plant

Pathol (Online) https://doi.org/10.1007/s10658-018-1543-3 diakses 21 September

2020.

Soesanto, L., Mugiastuti, E.& Manan, A. 2017. Identifikasi cendawan patogen gula

berdaun lebar dan uji virulensi terhadap gulma berdaun lebar.284-296. Dalam : A.

Khaernui R., M. Tufaila, Muhidin,G.A.K. Sutartiati, Rahayu, L.O.S. Bande,

Gusnawaty H.S., S.H. Hidayat, Baharuddin, A. Rosmana, T. Kuwinanti, I.S. Budi,

Lisnawita, R. Sriwati (eds.) September 2018.Prosiding Seminar Nasional dan

Kongres Perhimpunan Fitopatologi Indonesia, Universitas Jenderal Soedirman,

Purwokerto.

Sudriga, S.K. 2016. Isolasi dan identifikasi jamur Colletotrichum spp. isolat PCS

penyebab penyakit antraknosa pada buah cabai besar (Capsicum annum L.) di Bali.

Jurnal Metamorfosa. 3(1) : 23-30.

Sukmadjaja,D.&Mulyana,A. 2011. Regenerasi dan pertumbuhan beberapa varietas tebu

(Saccharum officinarum L.) secarain vitro. JurnalAgroBiogen, 7(2): 106-118.

Sutton, G. F., Canavan, K., Day, M. D., den Breeyen, A., Goolsby, J. A., Cristofaro, M.,

& Paterson, I. D. 2019. Grasses as suitable targets for classical weed biological

control. BioControl.(Onilne) doi:10.1007/s10526-019-09968-8, access at

September 5

2020.

Te Beest, D.O., Yang,X.B. &Cisar,C.R. 1992. The status of biological control of weed

with fungal pathogens. Annual Reviews Phytopatology. 30 :637-657.

Watanabe, T. 2010. Pictorial Atlas of Soil and Seed Fungi: Morphologies of Cultured

Fungi and Key to Spesies Thrid Edition. CRC Press. United States of America.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0

International License.